由于细胞系发生交叉污染或身份误认，可以导致实验数据的无效和数据的误导。NIH最近已发出公告，讨论细胞系鉴定的必要性，并且越来越的的期刊要求文章发表前需提供细胞鉴定材料。

细胞系鉴定目前主要基于Promega GenePrint® 10系统。这种系统可以通过多重PCR结合荧光探针检测技术，对人源7个STR位点以及1个性别决定位点进行检测。下表为这些位点的具体的遗传信息。

当建立或获得一个新的细胞系时 在细胞冻存之前，或细胞已连续培养2个月时
在开始系列实验或发表文章之前
细胞系表现不稳定或结果与预期差别较大时
当实验室使用超过一种细胞系时，所有细胞系**先鉴定以排除交叉污染的可能

每种细胞需单独收集在1.5ml离心管中，细胞数目在0.5 x 106至1 x 106之间。细胞需要离心沉淀，并且竟可能去除上清培养基，沉淀冰冻保存。细胞样本需保持冰冻状态直到基因组DNA提取完毕。并且在1.5ml管壁外标明细胞数目。

如果存在细胞系之间发生交叉污染，那么在进行STR位点检测的时候，多个位点会出现两个以上的峰。峰高值表示该等位基因的信号强度，理论上峰值与样本的DNA浓度有直接的关系。因此，存在交叉污染的混合细胞系中，其中一个位点中某些峰会明显高于其他的峰，其中大峰是属于混合细胞系中那个主要细胞系，而小峰则属于那个次要细胞系。值得注意的是，当发生两个或以上细胞混合的时候，检测结果看起来非常像细胞系的“遗传不稳定”——当一个细胞系存在亚群时，尤其是一些癌细胞系，由于遗传不稳定的存在，在一些位点的STR特性会不同。因此经验丰富的分子专家是非常重要的，他能够帮助分析复杂的电泳图谱（STR峰图），从而判断是否由于发生细胞系交叉污染而导致多等位基因情况。上海翼和应用生物，作为老牌的遗传技术服务公司，十年以上基因分型经验，可以帮你解决你的疑惑。

A.Cell Line Integrated Molecular Authentication (CLIMA) http://bioinformatics.istge.it/clima/
B.American Type Culture Collection (ATCC)
https://www.atcc.org/CulturesandProducts/CellBiology/STRProfileDatabase/tabid/174/Default.asx
C.Japanese Collection of Research Bioresource (JCRB) http://cellbank.nibio.go.jp/cellbank_e.html
D.German Collection of Microorganisms and Cell Cultures (DSMZ) http://www.dsmz.de/human_and_animal_cell_lines/main.php?contentleft_id=101

收到细胞系鉴定结果以及STR信息，可以自行和参考数据库进行比对。如果细胞样本的每个STR位点和参考细胞STR位点都能重合匹配，即说明该细胞系正确，反之则说明你的细胞系可能被错误标记，交叉污染或发生遗传不稳定。一般说来，匹配度≥80%即可认为该细胞系正确，匹配度＜80%则说明该细胞系的来源需要被怀疑。。
如果细胞系被鉴定出发生交叉污染或错误标记，则需要拿更早代数的细胞进行鉴定，从而找到问题的起源或者直接从可靠的机构购买一株新的细胞系。

如果已知数据库中没有找到你的细胞信息，你可以用自己的细胞遗传信息建立自己的遗传特性，以便后期进行自己细胞库的比对。

答案是肯定的。使用错误的细胞系或者是被污染的细胞系做研究，只会造成时间，金钱和精力的损失，以及造成实验结果的不一致和不可重复。因此如果用被污染或错误的细胞系做研究，在发表文章或做进一步研究时极有可能需要用正确的细胞再重复实验。