m6A是一种常见的RNA甲基化修饰方式,研究表明它在调控基因表达、剪接、RNA 编辑、RNA 稳定性、控制mRNA寿命和降解、介导环状RNA翻译等方面扮演重要角色。最新开发微量meRIP-seq技术,通过技术优化,500 ng~20 μg 总RNA即可满足实验要求。利用最新的去rRNA技术,可以同时检测mRNA及lncRNA的甲基化修饰谱,帮助研究人员对RNA转录后甲基化修饰图谱进行全面研究,是表观转录组学研究的关键技术。 1. 样本要求低,500 ng~20 μg总RNA即可 2. 同时适用于细胞株和临床样本的检测 3. 全面覆盖mRNA、lncRNA、circRNA的m6A修饰 1. 总RNA,500 ng~20 μg 2. 细胞,数量为5x106~107 3. 组织,质量为10~20 mg **人、大小鼠,其他物种需评估
图1. Peaks结构百分比图
图2. m6A修饰位点富集于终止密码子区域
图3. motif分析结果
图4. 某特定基因的m6A修饰区域 基本分析内容 1、 原始数据过滤及质控 9、差异peak关联基因GO,KEGG分析 高级分析内容 12. RNA可变剪切与m6A修饰差异关联分析 13. 翻译组RIBO-seq翻译差异与m6A修饰差异关联分析 什么是SELECT? 2018年10月,北京大学化学与分子工程学院贾桂芳课题组在《Angew. Chem. Int. Ed. (德国应用化学)》杂志报道了一种快捷检测RNA中N6-甲基腺嘌呤(N6-methyladenosine,m6A)的新方法。
北大贾桂芳课题组发布SELECT技术成果
SELECT技术原理图 对比SELECT与meRIP-qPCR
如何应用SELECT? 结合方法优化,SELECT方法有以下3个应用实例: SELECT方法不仅简化了生物学样品中m6A修饰的检测过程,实现低丰度RNA中m6A单碱基分辨率的检测,还能够应用于其他RNA化学修饰的检测中,例如N1-甲基腺嘌呤(N1-methyladenosine,m1A)和2’-O-甲基化修饰(2’-O-methylation,Nm)等。 应用示例: 1. 检测RNA目标位点是否存在m6A修饰;
2. m6A对特定位点的m6A修饰丰度进行绝对定量
利用系列浓度梯度的已知m6A成分标准品制作标准曲线,然后对特定位点上的m6A修饰成分进行定量 3. 鉴定m6A修饰相关蛋白(甲基化酶、去甲基化酶、识别蛋白等)的作用靶点 ![]() SELECT分析lncRNA MALAT1和以及METTL3+/- 细胞(对照组)的m6A2515 和A2511(input 对照)位点,荧光扩增曲线和qPCR CT 值柱状图显示lncRNA MALAT1 的2515 位点是METTL3 的一个靶点 多款SELECT检测试剂盒以及SELECT检测技术服务,填补市场上特定位点m6A常规检测技术的空白,协助研究者鉴定m6A相关蛋白的作用靶点,深入挖掘m6A修饰的作用机制,有望为RNA m6A修饰分子标志物的发现带来新突破。 项目简介: Ribo-seq(Ribosome profiling或Ribosome sequencing)即核糖体印迹测序技术,系由Weissman课题组于2009年首次发表的翻译组学研究技术。利用Ribo-seq,研究者能从基因组水平检测蛋白质的翻译状况,获得全面的、高质量的蛋白质翻译速度情况,了解蛋白质表达情况及其丰度,还能直接对翻译过程进行研究。 技术原理: 利用核酸酶降解没有核糖体覆盖的mRNA片段,高通量测序获得ribosome footprints,及核糖体分布的位置信息。而footprints密度越高的位点,表明翻译延长速率越慢。
技术应用: 联合longRNA-seq,研究转录本上正在进行的翻译情况,深入了解基因调控最重要层面: 1、了解转录本上的核糖体分布、翻译活性 2、推测翻译起始位点、ORF位置 3、确定蛋白翻译效率 4、探究翻译调控和基因表达情况 5、鉴定新蛋白/新短肽 送样要求: 样本物种:**人、大小鼠、其他物种需评估 样本类型: 1、细胞:大于等于1*10的7次方个细胞/样本 2、组织:大于等于50mg/样本 样品分组: 1、常规要求至少2组样品,包括对照组和和实验组(临床样本为正常人组和患者组) 2、每个样品均进行Ribo-seq和longRNA-seq 3、样本数建议:3 VS 3 真核基因通常产生多种RNA异构体(isoform),可以产生功能上不同的蛋白质变体。传统二代测序实际上是一种短读长RNA-seq,难以获得完整的转录本,无法体现异构体的多样性。 ONT Direct RNA全长转录组测序服务,基于Oxford Nanopore公司的纳米孔测序平台,直接对RNA进行测序,具有长读长的优势,提高对异构体的检测,还能直接检测m6A、m5C等核酸修饰,在可变剪切研究方面具有独特的优势。一次测序,即可满足多项表观遗传转录组研究需求,大大提升研究的高度、深度、准确性、效率,尤其适用于多组学分子机制及珍贵的临床样本研究。 技术应用1. 对单个RNA分子进行单分子水平的全长测序 2. 识别更长的转录本,研究转录异构体 3. 绘制转录组上的m6A修饰图谱,分辨率可达到单位点 4. 检测RNA可变剪切的情况 技术优势 1. 作为长读长测序技术,能减少短读长测序打断后重新拼接带来的歧义,结果准确度更高、更可信; 2. 能够直接对RNA进行测序,避免逆转录和PCR扩增导致的RNA修饰信息缺失; 3. 可以直接检测m6A等碱基修饰,配合优化的算法,获得无损的m6A单碱基分辨率图谱; 4. 一次测序,多套数据:转录组图谱、m6A修饰图谱、异构体、可变剪切情况,节省珍贵的临床样本,节省样本准备时间和精力,且保持了样本的统一性。 送样要求 总RNA:>20ug 细胞数量:1x107 分析流程
分析内容 一、isoform分析 1. 可变剪切分析 2. 融合基因鉴定 3. SSR分析 4. LncRNA分析 5. PolyA分析 二、表达定量 1. 转录本定量 2. 转录本差异分析 3. 富集分析 4. 蛋白质互作网络 三、甲基化修饰分析 1. m5C位点注释 2. m6A位点注释 3. 甲基化修饰富集分析 4. m5C差异分析 5. m6A差异分析 四、isoform联合定量表达分析 1. AltTP分析 2. 功能多样性分析(FDA) 3. 差异富集分析
实测数据
图1. isoform差异热图
图2. isoform显著差异火山图
图3. m6A在RNA结构上的分布饼图 案例解读:RNA直接测序应用于鉴定内源转录本异构体的m6A修饰[1] 为了将RNA直接测序应用于单位点分辨率的RNA修饰从头测序,研究员研发了利用纳米孔RNA直接测序的m6A鉴定软件(MINES),对HEK293T细胞转录本进行了分析,鉴定超过13,000个之前未注释的DRACH位点的m6A甲基化状态;还在人乳腺上皮细胞(包括异构体)中鉴定得40,000个位点,这些位点分别对m6A writer、METTL3、eraser、ALKBH5敏感。以上数据表明,纳米孔RNA直接测序鉴定m6A修饰的效果优异。
纳米孔测序能从DRACH motif中检测出m6A修饰 参考文献: [1] DANIEL A. LORENZ, et al. Direct RNA sequencing enablesm6A detection in endogenous transcript isoforms at base-specific resolution. RNA(2020) 26:19–28. |